SOUTHERN PROBE DNA PREPARATION
IRS-1
����������� 1.�������� Grow
up bacteria (use amp LB) from glycerol stocks
����������� 2.�������� Use
a Qiagen prep to purify the DNA
����������� 3.�������� Digest
plasmid DNA as follows:
����������������������� 25 ml DNA
����������������������� 2.5 ml Xba1
����������������������� 2.5 ml BamH1
����������������������� 3.0 ml Buffer 4
����������������������� 0.5 ml BSA
����������� 4.�������� Digest
for 2 hours at 37�C
����������� 5.�������� Run
digest on a 2% low-melt gel
����������� 6.�������� Excise
the 300 b.p. band
����������� 7.�������� Use
Mermaid kit to clean (use ~ 10 ml GlassFOG)
����������� 8.�������� Re-suspend
in ~20 ml of sterile water
IRS-2
����������� 1.�������� Prepare
PCR reaction:
����������������������� 5 ml buffer
����������������������� 1 ml dNTP mix
����������������������� 2 ml 3� primer (with green tape)
����������������������� 2 ml 5� primer (with green tape)
����������������������� 0.5 ml Taq
����������������������� 2 ml IRS-2 probe DNA
����������������������� 37.5 ml sterile water
����������� 2.�������� PCR
profile:
����������������������� 94�C for 5 minutes
����������������������� 94�C for 1 minute
����������������������� 60�C for 1 minute��������������������������������� 30 cycles
����������������������� 72�C for 1 minute
����������������������� 72�C for 10 minutes
����������������������� 4�C for 1 hour
����������� 3.��������
STF
����������� 1.�������� Grow
up bacteria and purify DNA via Qiagen prep
����������� 2.�������� Digest
as follows:
����������������������� 2.5 ml Xba1
����������������������� 2.5 ml EcoR1
����������������������� 5 ml buffer 2
����������������������� 0.5 ml BSA
����������������������� 25 ml DNA
����������� 3.�������� Run
digest on 2% low-melt gel.
����������� 4.�������� Excise
which band?
����������� 5.�������� Purify
with GeneClean or Mermaid kit?
IGF
����������� 1.�������� Digest
plasmid with BamH1 and HincII
����������� 2.�������� Excise
460 b.p. band
IMM
����������� 1.�������� Plasmid
is RSVTEK
����������� 2.�������� Digest
as follows:
����������������������� 30 ml DNA
����������������������� 10 ml Pst1
����������������������� 10 ml buffer 3
����������������������� 50 ml sterile water
����������� 3.�������� Digest
at 37�C for 2 hours
����������� 4.�������� Run
on 2% low-melt gel
����������� 5.�������� Excise
1.6 kb band
�����������